Análisis | Especificación |
Aspecto | Solución clara color anaranjado |
Densidad (20°C) | 0,810-0,830 |
Identificación Espectrofotométrica A | |
λ máx. | 475-485 nm |
Identificación Espectrofotométrica B | |
Relación abs. (p-15)/ abs. (p+15) | 0,88-0,95 |
OG 6 según
PAPANICOLAOU (Solución)
Cat.
Nro. 2000110200
Reactivo
de Diagnostico para Uso in Vitro
Uso Previsto:
OG
6 según Papanicolaou es una solución colorante que se utiliza para el
diagnóstico celular, mediante la exanimación al microscopio de extendidos
citológicos.
Esta
solución colorante OG 6 junto al EA 36 / EA 50 y la Hematoxilina de Harris son
reactivos integrantes de la técnica de Tinción según PAPANICOLAOU. Dicha
técnica es el método por excelencia para el diagnóstico de muestras
citológicas, cérvico vaginales, líquidos o fluidos obtenidos por punción, y de
exudados y secreciones corporales en la medicina humana.
Principio:
OG
6 es una solución alcohólica acidificada del colorante biológico conocido como
Naranja G.
El
medio alcohólico de ésta solución aporta una coloración citoplasmática fina y
transparente característica de la tinción de Papanicolaou.
Ésta
solución colorante monocromática es la responsable de aportar diferencialmente
las tonalidades rojas y anaranjadas a las proteínas del citoplasma, tiñe el
citoplasma del epitelio escamoso simple, maduro y queratinizado.
Además
colorea eritrocitos, cristales de hemosiderina, cuerpos de asbesto.
Procedencia de las
muestras:
Extendidos
citológicos de muestras ginecológicas y no ginecológicas como esputos, orina,
frotis tomados de punciones aspirativas con aguja fina (PAAF), soluciones de
lavado, exudados y secreciones corporales.
Reactivos y presentación:
OG
6 según Papanicolaou Solución (Cod. 2000110200)
Envase
500 mL (Cod. 2000110207)
Envase
1000 mL (Cod. 2000110208)
Reactivos
necesarios no provistos para Tinción de Papanicolaou:
• Fijador Citológico Pathofix (Cod.
2000953000)
• Fijador de Saccomano (Cod.
2000958800)
Tinción
Nuclear:
• Hematoxilina de Harris (Solución)
Cod.2000083200
• Hematoxilina s/Gill II (Solución)
Cod. 2000949100
Tinción
diferenciada:
• EA 36
s/Papanicolaou (Solución); Cod. 2000110300
• EA 50 s/Papanicolaou (Solución); Cod.
2000110700
• Bálsamo de Canadá Sintético Cod.
2000130300
Preparación de las
muestras:
La
toma de muestra debe ser realizada por personal especializado.
Para
lograr una satisfactoria preparación citológica es necesario que la toma o
recolección del material sea adecuada. De ser un frotis o extendido celular,
que el mismo no cuente con grandes conglomerados celulares (superposición
celular). Esto dificulta la fijación, la correcta tinción y la posterior
visualización al microscopio.
Todas
las muestras deben estar rotuladas inequívocamente.
Fijación:
1. Citología ginecológica: realizar la fijación
de la muestra inmediatamente después de realizado el extendido sumergiendo en
Alcohol Etílico 96° o rociando con Fijador Citológico Pathofix (Cod.
2000953000) Continuar con procedimiento de tinción.
2. Citología oncológica y / no ginecológica:
Agregar solución de Fijador de Saccomano (Cod. 2000958800) a igual volumen de
muestra, homogenizar y dejar fijar durante 60 minutos. Centrifugar, realizar
extendidos citológicos y dejar secar para lograr mayor adhesión de la muestra.
Continuar con procedimiento de tinción.
Preparación de los
reactivos:
OG
6 según PAPANICOLAOU (Solución) es un reactivo listo para usar.
La
dilución de este reactivo puede variar los resultados y estabilidad esperados
del producto.
Procedimiento de
tinción - Técnica de Papanicolaou:
En
cubeta de tinción, método manual
Consideraciones
previas:
• La inmersión de los extendidos debe
ser completa.
• La inmersión incompleta de las
muestras proporcionará resultados de tinción insuficientes.
• Los portaobjetos deberán ser
escurridos después de los diferentes pasos del procedimiento de tinción para
minimizar el arrastre de soluciones.
Portaobjetos con extendido / frotis /
impronta fijados
Paso Método
/ Reactivo Técnica / Tiempo
1 Sumergir
en Alcohol 96° 5 minutos
2 Lavar
en agua destilada Varias inmersiones, hasta
completa hidratación
3 Teñir
con Hematoxilina de Harris // Gill II 40
segundos / 2 minutos (*1)
4 Virar
en agua corriente 5 minutos
5 Sumergir
en Alcohol 96° Varias inmersiones / 5 segundos
6 Teñir
con OG 6 1
/3 minutos (*1)
7 Sumergir
en Alcohol 96° Varias inmersiones / 5 segundos
8 Teñir
con EA 36 / EA 50 40 segundos / 2 minutos (*1)
9 Sumergir
en Alcohol 96° Varias inmersiones / 5 segundos
10 Sumergir
en Alcohol 96° Varias inmersiones / 5 segundos
11 Sumergir
en Alcohol 100° Varias inmersiones / 5 segundos
12 Sumergir
en Xilol / Bioclear (*2) Varias
inmersiones / 5 segundos
13 Sumergir
en Xilol / Bioclear (*2) Varias
inmersiones / 5 segundos
14 Montar
con Bálsamo de Canadá Sintético (Cod. 2000130300) y cubreobjetos. En el caso de
aclarar con Bioclear (Cod. 2000942700) (*1), se recomienda eliminar el exceso
de aclarante, para que el bálsamo se disperse y cubra por completo la muestra
al colocar el cubreobjeto.
15 Observar
al microscopio.
(*1) – Los tiempos de tinción con
Hematoxilina Harris o Gill II podrán ser modificados y ajustados por el
operador, teniendo en cuenta la intensidad de tinción deseada.
(*2) - Bioclear (Cod. 2000942700) es el
aclarante uso histológico, sustituto del Xilol, válido para procesamiento
histológico de muestras y montaje final con Bálsamo de Canadá sintético y
cubreobjetos
Resultados:
Núcleos celulares Azul grisáceo
Células superficiales Rosa
Células Acidófilas
Rojo
Células Intermedias y parabasales:
Azul
Células basófilas: Verde azulado
Eosinófilos:
Rojo-Naranja
Eritrocitos:
Rojo-Naranja
Cándidas:
Rojo
Citoplasma queratinizado:
Rosa - Naranja
Trichomonas: Verde
grisáceo
Notas
técnicas:
·
Para el análisis de preparados con aumento microscópico mayor a
40x se recomienda el uso de aceite de inmersión.
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Nuestro equipo de cientificos tiene experiencia en todas las areas de investigación.Servicio Técnico:
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